TP 1ère EDS : Mitose sur racine d'échalote, coloré au jus de myrtilles

Matériels élèves :

• Plante à bulbe avec jeunes racines

• Petits ciseaux

• Pointe

• Pince fine

• Plaque de titration + marqueur

• Lame, lamelle

• Microscope, caméra

• Bouchon

• Papier absorbant

• chronomètre

• acide chlorhydrique à 1 mol/L

• Eau distillée

• jus de myrtille avec pipette

•  
• Notre protocole : (Source : planet-vie + nos tests)
•  
• Préparation du colorant : 
• Transvaser le contenu d’un sachet de myrtilles congelées dans un sac plastique. Étiqueter ce dernier avec la mention « ne pas consommer »
• Versez la moitié du sachet dans un gros bécher et laisser décongeler au frigo.
• Récupérer le jus et le filtrer sur un papier filtre.

Cette solution mère se conserve 3 à 4 jours à l’obscurité.

• Pour observer des figures de méiose, on utilisera des boutons floraux d’ail, de poireaux ou d’ail des ours.

Méthode de coloration

La coloration, simple à réaliser, se déroule en plusieurs étapes.

Certains matériels végétaux, comme les racines, ont des cellules fortement soudées les unes aux autres par un ciment pectique. Une hydrolyse acide permet une meilleure dissociation des cellules, une meilleure coloration et un écrasement plus aisé du matériel végétal, pour observer une couche d’une seule épaisseur de cellules. Elle améliore donc l’observation.

• Déposer quelques gouttes d’une solution d’acide chlorhydrique 1N dans une cupule.
• Au bout de 5 minutes absorber le liquide par un carré de papier filtre.
• Laver trois fois à l’eau du robinet, au dessus d'un bécher.

• Déposer une goutte de colorant sur une lame.
• Placer la pointe de racine dans le colorant.
• Déposer une lamelle sur la goutte de colorant.
• Pratiquer un écrasement entre lame et lamelle à l'aide d'un bouchon de liège.

La coloration est généralement rapide, en deux minutes.

Nos test : 

09/26 :  - échalote : on ne voit pas les phases de la mitose

Avec KNOP : pas de différence