Préparation de solutions

Découper des feuilles de Laurier-Cerise (Prunus Lauro-Cerasus) en morceaux dans un mortier
Broyer les feuilles dans un peu d’eau physiologique ou de tampon de respiration pour mitochondries
Filtrer l’extrait qui contient de l’acide cyanhydrique libéré par hydrolyse et le broyage

Amylase :

Réaction rapide (ex : spécificité des enzymes sur différents substrats) : 2 comprimés de maxilase dans de l'eau tiède pour dissoudre les couches oranges et blanches (glucose) . Laisser dissoudre et rincer plusieurs fois avec une passoire. Bien sécher le comprimé.

Puis les récupérer, les broyer avec un mortier et les dissoudre dans 100 mL d'eau. On peut ajouter 5 mL de CaCl₂ à 10 g.L^-1 pour la conservation. La solution se conserve une semaine au réfrigérateur.

Réaction lente (ex TP vitesse de réaction de l'amylase): 2 comprimés dans 100 mL -> cela va trop vite, l'amidon est trop rapidement hydrolysé!! Pour ce type de TP on préparera 1 comprimé pour 100 mL.

Biuret (réactif) :

3 g de sulfate de cuivre (5H2O)
9 g de tartrate de sodium et de potassium
5 g d'iodure de potassium
1 L de soude à 0.2 mol/L

Dissoudre sulfate et tartrate dans 500 mL de la solution de soude. Ajouter l'iodure de potassium. Compléter à 1L avec la solution de soude.

Ce réactif prend une coloration violette en présence de liaison peptidique (jus de pois chiche, blanc d’œuf...)

ou 1 flacon de Cu2+ à 10% et 1 flacon de NaOH à 20%, les élèves utilisent les 2 flacons sur l'échantillon.

Britton-Robinson 1 L :

12,5 mL d'H3PO4 à 1 mol/L
12,5 mL d'acide éthanoïque à 1 mol/L
125 mL d'acide borique à 0,1mol/L ( ou 0,77g )
eau déminéralisée qsp 1 L

Déboucheur (DESTOP) :

Soude à 6 mol/L (NaOH, hydroxyde de sodium)

Dakin :

Permanganate de potassium à 10 mg /L

Eau de chaux : Ca(OH)2 :

Dissoudre de l'hydroxyde de calcium (ou oxyde de calcium) jusqu'à saturation, 1 bonne cuillère à café dans 1 L d’eau sous agitation. Laisser reposer plusieurs heures. Filtrer. Conserver dans un flacon à l’abri de l'air.

Eau de mer artificielle :

35 g de chlorure de sodium
0.8 g de chlorure de magnésium
6.6 g de sulfate de magnésium
1.3 g de chlorure de calcium
0.5 g d'hydrogénocarbonate de sodium

Puis compléter à un litre avec de l’eau distillée.

Eau Iodée, diiode :

Bétadine jaune 10% : Solution de diiode à C(I₂) = 1,3 .10^-1 mol/L
Bétadine rouge 4% : Solution de diiode à C(I₂) = 1,7 .10^-2 mol/L (C(I₂) : I₂ : 0,432g dans 100 mL donc 4,32g/L donc 0,017 mol/L)

Lugol : C(I₂) = 4.10^-2 mol/L. (avec la poudre : 1g d’iode avec 2g d’iodure de potassium. Diluer peu à peu avec de l’eau distillée et, après avoir versé dans une fiole jaugée, amener à 100 mL)

Eau iodée ou lugol (S.V.T) : flacon brun

Pour des tests en cupule : diiode : 1.10-3mol/L
Pour une coloration de préparation microscopique : diiode : 2.5.10-2 mol/L

Diiode

Eau oxygénée :

La concentration d’une eau oxygénée dite à 110 volumes (le plus souvent celle du commerce) est de 9,82 moles d’ H₂O₂ par litre.

130 vol : 11.61 mol/L
110 vol : 9.82 mol/L
10 vol : 0.883 mol/L

Eau physiologique :

9 g d'NaCl dans 1 L d'eau distillée.

Empois d'amidon 500 mL :

5 g d'amidon dans un bécher avec 50mL d'eau distillée
Verser dans 450 mL d'eau bouillante
Laisser bouillir 2 a 3 min

La solution doit rester translucide et non blanche. Cette solution peut se conserver au réfrigérateur pendant plusieurs semaines.

Lait d'amidon : idem empois d'amidon mais on ne chauffe pas.

Électrolyte sonde pH :

50% KCl à 4mol/L
50% solution Tampon pH4

Eosine (TP muscle) :

15 gouttes d'éosine dans 500 mL d'eau distillée
Pour ce TP, il faut de l'éosine dilué.

Étalon conductimétrie :

1413 µS/cm : 0.01 mol/L de KCl (ou 0.75 g/L)
12880 µS/cm : 0.1 mol/L de KCl (ou 7.5 g/L)

Gélose pour ouchterlony :

3 g d'agar agar dans 200mL d'eau, faire bouillir légèrement.

A l'aide d'une pipette graduée, verser 5 mL dans une boite de pétrie de 5 cm de diamètre. On obtient environ 30 boites!

Plus d'info ici

Glycérol 50 % TP conservation du muscle :

250 mL de Glycérol + 250 mL d'eau distillée

Kit salive :

pour environ 25 petites boites (diam. 40mm) :

250 mL d'eau distillée + 2 g d'agar agar + 1 g d'amidon (faire bouillir et couler dans les boites de pétri)
coton tige
solution d'amylase (1 comprimé dans 500mL d'eau)
flacon compte goute de lugol

Voir le TP

KNOP :

Eau distillée : 1000g
Nitrate de Ca : 1g
Nitrate de K : 0,25g
Phosphate de K : 0,25g
Sulfate de Mg (ou sulfate de Ca) : 0,25g
Phosphate de fer : 0,1g

Levures en suspension :

- 10 g de levure fraiche pour 1 L d'eau, cube en supermarché ou un morceau en boulangerie.

Utiliser des levures congelées permet de ralentir la croissance, voire de les affamer. Et donc lorsque on introduira le glucose dans la cuve, elles mettrons en route la respiration.

- 2.5 g de levure lyophilisée pour 1 L d'eau, pratique car facile à conserver!

Plus de détail ici

Liqueur de savon

Liqueur de savon : savon liquide ou liquide vaisselle dans de l'éthanol.

On voit uniquement la différence de la taille de la mousse.

Eau savonneuse : 3 g de copeaux de savon dans 100mL d'eau.

On voit la différence de mousse et la solubilité.

Permanganate de potassium acidifié (1L) :

Peser le permanganate de potassium
Ajouter l'eau distillée au 3/4
puis 20 à 30 mL d'acide sulfurique concentré (98%), ajuster au trait de jauge.

Attention cette solution se conserve très peu de temps! (1 journée maxi!)

Je préfère acidifier l'autre solution, par exemple le sulfate de fer.

NaCl saturé :

dans un bécher de 600 mL, remplir jusqu'à 500 mL d'eau, ajouter un agitateur magnétique. En agitant, introduire petit à petit 170 g de NaCl (ou 358 g dans 1 L)

Poudre de carbone

Mélange stœchiométrique de C et CuO. (Pas CU2O)

Ringer (liquide de) :

6,5 g de NaCl
0,25g de KCl
0,12g de CaCl₂
0,20g de NaHCO₃

Solution Tampon pH 10 (voir fiche solution tampon) (en réalité pH9, pour éviter qu'il ne sente trop l'ammoniaque!!) : utile notamment pour le TP EDTA

Tampon borate pH=9.6 : Pour 1 L :